Metabolit Antibakteri dari Aspergillus nidulans DSP 20, Jamur Endofit Mangrove Asosiasi Sesuvium portulacastrum
DOI:
https://doi.org/10.36387/jifi.v9i1.2977Kata Kunci:
Aspergillus nidulans, jamur endofit, Sesuvium portulacastrum, mangrove asosiasi, antibakteri, metabolit sekunderAbstrak
Jamur endofit merupakan sumber potensial metabolit sekunder dengan aktivitas antibakteri yang relevan dalam pengembangan bahan baku obat. Penelitian ini bertujuan mengevaluasi potensi jamur endofit Aspergillus nidulans DSP 20 sebagai penghasil metabolit antibakteri yang diisolasi dari daun Sesuvium portulacastrum pada ekosistem mangrove asosiasi Sekotong, Kabupaten Lombok Barat, Nusa Tenggara Barat. Isolasi jamur endofit dilakukan melalui sterilisasi permukaan jaringan daun, diikuti pemurnian dan karakterisasi morfologi isolat. Produksi metabolit sekunder dilakukan menggunakan fermentasi media padat selama 21 hari, kemudian diekstraksi dengan etil asetat. Profil metabolit dianalisis secara kualitatif menggunakan kromatografi lapis tipis, sedangkan aktivitas antibakteri diuji secara in vitro terhadap Staphylococcus aureus dan Escherichia coli menggunakan metode difusi cakram. Isolat DSP 20 teridentifikasi secara morfologi sebagai Aspergillus nidulans dan menunjukkan kemampuan menghasilkan metabolit sekunder dengan aktivitas penghambatan terhadap bakteri uji. Penelitian ini menempatkan A. nidulans tidak hanya sebagai organisme model genetika, tetapi juga sebagai jamur endofit pesisir dengan potensi farmasi. Temuan ini memberikan dasar awal bagi eksplorasi lanjutan metabolit antibakteri berbasis jamur endofit mangrove asosiasi.
Referensi
1. Tarin-Pello A, Suay-Garcia B, Perez-Gracia MT. Antibiotic resistant bacteria: current situation and treatment options to accelerate the development of a new antimicrobial arsenal. Expert Rev Anti Infect Ther. 2022;20:1095-108.
2. Srinivasan R, Kannappan A, Shi C, Lin X. Marine bacterial secondary metabolites: a treasure house for structurally unique and effective antimicrobial compounds. Mar Drugs. 2021;19:530.
3. Jha P, Kaur T, Chhabra I, Panja A, Paul S, Kumar V, et al. Endophytic fungi: hidden treasure chest of antimicrobial metabolites interrelationship of endophytes and metabolites. Front Microbiol. 2023;14:1227830.
4. Palit K, Rath S, Chatterjee S, Das S. Microbial diversity and ecological interactions of microorganisms in the mangrove ecosystem: threats, vulnerability, and adaptations. Environ Sci Pollut Res Int. 2022;29:32467-512.
5. Chen S, Cai R, Liu Z, Cui H, She Z. Secondary metabolites from mangrove-associated fungi: source, chemistry and bioactivities. Nat Prod Rep. 2022;39:560-95.
6. Djamain NS, Anggia V, Fachrunisa N. Uji aktivitas antibakteri gel ekstrak etanol daun angsana (Pterocarpus indicus Willd.) terhadap bakteri Staphylococcus aureus. Jurnal Insan Farmasi Indonesia. 2020;3(1):124-31.
7. Kumalasari E, Agustina D, Ariani N. Uji aktivitas antibakteri ekstrak daun bawang dayak (Eleutherine palmifolia Merr.) terhadap Escherichia coli. Jurnal Insan Farmasi Indonesia. 2020;3(1):75-84.
8. Monica C, Zamzani I, Nashihah S. Aktivitas antibakteri ekstrak etanol 96% daun bangkal (Nauclea subdita) terhadap bakteri Staphylococcus aureus. Jurnal Insan Farmasi Indonesia. 2024;7(2):33-43.
9. Ayuchecaria N, Oksal E, Martani NS, Komara NK, Chuchita, Pereiz Z. Skrining fitokimia dan uji antibakteri ekstrak etanol daun hanjuang merah (Cordyline fruticose) terhadap bakteri Staphylococcus epidermidis. Jurnal Insan Farmasi Indonesia. 2024;7(1):86-94.
10. Brakhage AA, Schroeckh V. Fungal secondary metabolites - strategies to activate silent gene clusters. Fungal Genet Biol. 2011;48:15-22.
11. Inglis DO, Binkley J, Skrzypek MS, Arnaud MB, Cerqueira GC, Shah P, et al. Comprehensive annotation of secondary metabolite biosynthetic genes and gene clusters of Aspergillus nidulans, A. fumigatus, A. niger and A. oryzae. BMC Microbiol. 2013;13:91.
12. Ghazawi KF, Fatani SA, Mohamed SG, Mohamed GA, Ibrahim SRM. Aspergillus nidulans - natural metabolites powerhouse: structures, biosynthesis, bioactivities, and biotechnological potential. Fermentation. 2023;9:325.
13. Safwan S, Hsiao G, Lee TH, Lee CK. Bioactive compounds from an endophytic fungi Nigrospora aurantiaca. Bot Stud. 2021;62:18.
14. Safwan S, Wang SW, Hsiao G, Hsiao SW, Hsu SJ, Lee TH, et al. New trichothecenes isolated from the marine algicolous fungus Trichoderma brevicompactum. Mar Drugs. 2022;20:80.
15. McIntyre M, Dynesen J, Nielsen J. Morphological characterization of Aspergillus nidulans: growth, septation and fragmentation. Microbiology. 2001;147:239-46.
16. Han KH, Lee DB, Kim JH, Kim MS, Han KY, Kim WS, et al. Environmental factors affecting development of Aspergillus nidulans. J Microbiol. 2003;41:34-40.
17. Klejnstrup ML, Frandsen RJN, Holm DK, Nielsen MT, Mortensen UH, Larsen TO, et al. Genetics of polyketide metabolism in Aspergillus nidulans. Metabolites. 2012;2:100-33.
18. Jia SL, Chi Z, Liu GL, Hu Z, Chi ZM. Fungi in mangrove ecosystems and their potential applications. Crit Rev Biotechnol. 2020;40:852-64.
19. Giles SS, Soukup AA, Lauer C, Shaaban M, Lin A, Oakley BR, et al. Cryptic Aspergillus nidulans antimicrobials. Appl Environ Microbiol. 2011;77:3669-75.
Unduhan
Diterbitkan
Terbitan
Bagian
Lisensi
Hak Cipta (c) 2026 Jurnal Insan Farmasi Indonesia
Artikel ini berlisensiCreative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.
